Western Blot คืออะไร? หลักการและขั้นตอนสำหรับห้องแล็บวิจัย
การที่แถบโปรตีน (bands) ไม่ชัดเจน สัญญาณอ่อน หรือมีสัญญาณรบกวนพื้นหลังสูง มักทำให้โครงการวิจัยล่าช้าและส่งผลต่อการตัดสินใจเลือกซื้อสารเคมี ก่อนที่คุณจะเปลี่ยนแอนติบอดีหรือซื้อชุดคิทใหม่ การกลับมาทบทวน western blot principle (หลักการของเวสเทิร์นบล็อต) และสืบหาสาเหตุของปัญหาในแต่ละขั้นตอนการทำงานถือเป็นสิ่งสำคัญ คู่มือฉบับนี้จะอธิบายขั้นตอนการทำงานตั้งแต่การเตรียมตัวอย่างจนถึงการตรวจวัด พร้อมทั้งอธิบายตรรกะเบื้องหลังและแนะนำผลิตภัณฑ์ที่ช่วยเพิ่มความแม่นยำและทำซ้ำได้ (reproducibility) ให้ดียิ่งขึ้น
Western blot คืออะไร ในบริบทของห้องปฏิบัติการวิจัย?
western blot คืออะไร? คำตอบคือเป็นกระบวนการวิเคราะห์โปรตีน (immunoassay) ที่ใช้ระบุโปรตีนเป้าหมายในตัวอย่างที่มีความซับซ้อน โดยการผสมผสานการแยกโปรตีนตามขนาดเข้ากับการจดจำโดยแอนติบอดี โปรตีนจะถูกแยกด้วยวิธี SDS-PAGE จากนั้นจึงย้าย (transfer) ไปยังเมมเบรนและตรวจสอบด้วยแอนติบอดี เพื่อแสดงผลเป็นแถบโปรตีนที่ตำแหน่งน้ำหนักโมเลกุลที่คาดหวัง ความสำเร็จในการตรวจวัดขึ้นอยู่กับประสิทธิภาพของการ transfer, การทำ blocking ที่มีประสิทธิภาพ และความจำเพาะของแอนติบอดี
Western blot ช่วยยืนยันเอกลักษณ์ ปริมาณสัมพัทธ์ และรูปแบบหลังการสังเคราะห์ (post-translational forms) ของโปรตีน เมื่อน้ำหนักโมเลกุลและการทำปฏิกิริยากับแอนติบอดีสอดคล้องกัน ห้องแล็บส่วนใหญ่ใช้เทคนิคนี้เพื่อยืนยันการแสดงออกของยีนหลังการถ่ายโอน (transfection), ตรวจสอบผลการวิเคราะห์จากโปรตีโอมิกส์หรือ ELISA, ติดตามการกระตุ้นของวิถีทางชีวภาพ (pathway activation) และตรวจสอบความบริสุทธิ์ระหว่างการเตรียมโปรตีน
ผลลัพธ์ของวิธีนี้เป็นแบบกึ่งปริมาณ (semi-quantitative) การเปรียบเทียบที่เชื่อถือได้จึงจำเป็นต้องทำ normalization ด้วยโปรตีนรวม (total protein stains) หรือใช้ housekeeping controls ที่ได้รับการรับรองอย่างถูกต้อง
western blot principle และขั้นตอนการทำงานโดยละเอียด
ในขั้นตอนแรก โปรตีนจะถูกทำลายโครงสร้าง (denatured) และแยกด้วย SDS-PAGE จากนั้นจะถูกขับเคลื่อนด้วยสนามไฟฟ้าไปยังเมมเบรนที่มีความสามารถในการจับโปรตีนสูง เมมเบรนจะถูกทำ blocking เพื่อปิดตำแหน่งว่างไม่ให้เกิดการจับแบบไม่จำเพาะ ก่อนจะบ่มด้วยแอนติบอดีปฐมภูมิ (primary antibody) ที่จำเพาะต่อเป้าหมาย ตามด้วยแอนติบอดีทุติยภูมิ (secondary antibody) ที่มีฉลากเพื่อสร้างสัญญาณผ่านวิธีเคมีเรืองแสง (chemiluminescence) หรือการเรืองแสง (fluorescence) ความจำเพาะของการจับ ประสิทธิภาพของการ transfer และช่วงสัญญาณที่เป็นเส้นตรง (linear signal response) คือตัวกำหนดคุณภาพของข้อมูล
western blot principle ตั้งอยู่บนพื้นฐานของความสัมพันธ์ระหว่างแอนติเจนและแอนติบอดี ร่วมกับการควบคุมสัญญาณรบกวนพื้นหลังผ่านบัฟเฟอร์ที่เหมาะสมและขั้นตอนการล้างที่ทั่วถึง
หลักการพื้นฐานในทางปฏิบัติ
SDS และสารรีดิวซ์ (reducing agents) จะทำให้โปรตีนคลายตัวเป็นเส้นตรงเพื่อให้การเคลื่อนที่ผ่านเจลแปรผันตรงกับขนาดโมเลกุล เมมเบรน PVDF หรือ nitrocellulose จะจับโปรตีนไว้ผ่านแรงดึงดูดทางไฮโดรโฟบิกและไฟฟ้าสถิต แอนติบอดีปฐมภูมิจะทำหน้าที่ค้นหาแอนติเจนบนเมมเบรน และเอนไซม์หรือสารเรืองแสงจะเปลี่ยนเหตุการณ์การจับนั้นให้เป็นแสงหรือสัญญาณที่วัดค่าได้
ขั้นตอนการทดลอง
การเตรียมตัวอย่าง: ทำลายโครงสร้างโปรตีนด้วย SDS และสารรีดิวซ์ เช่น DTT หรือ TCEP ให้ความร้อนเล็กน้อย และโหลดปริมาณโปรตีนให้เท่ากันในแต่ละเลน เลือกความเข้มข้นของเจลให้เหมาะสมกับช่วงน้ำหนักโมเลกุลที่สนใจ หากต้องการรายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับการเพิ่มประสิทธิภาพการแยกด้วยเจล โปรดอ่านบทความเรื่อง การแยกโปรตีนตามขนาดโดยใช้ SDS-PAGE
อิเล็กโทรโฟรีซิส (Electrophoresis): รันเจลจนกระทั่งแถบโปรตีนแยกออกจากกันอย่างชัดเจน จากนั้นปรับสมดุลเจลใน transfer buffer ก่อนประกอบ stack สำหรับการ transfer ผลิตภัณฑ์ Merck Protein Electrophoresis Gels & Buffers ช่วยให้แถบโปรตีนมีความละเอียดสม่ำเสมอในทุกการรัน ลดความจำเป็นในการปรับเปลี่ยนเงื่อนไขบ่อยครั้ง
การย้ายโปรตีน (Transfer): ประกอบเมมเบรนอย่างระมัดระวัง กำจัดฟองอากาศออกให้หมด และทำ transfer ภายใต้สภาวะแบบเปียก (wet) หรือกึ่งแห้ง (semi-dry) ตรวจสอบความสมบูรณ์ของการ transfer ด้วย Ponceau S หรือ total protein stain ก่อนเข้าสู่ขั้นตอนการทำ blocking เมมเบรนจาก Merck Immobilon Transfer Membranes & Kits ได้รับการออกแบบมาเพื่อรักษาความสามารถในการจับโปรตีนบนพื้นผิวให้สม่ำเสมอ จึงลดโอกาสการสูญเสียสัญญาณจากการ transfer ไม่สมบูรณ์
การทำ Blocking และการตรวจสอบ: บ่มเมมเบรนด้วยนมผงหรือ BSA ในสารละลาย TBST บ่มร่วมกับแอนติบอดีปฐมภูมิที่ระดับความเข้มข้นและอุณหภูมิที่ผ่านการทดสอบมาแล้ว จากนั้นล้างเมมเบรนให้สะอาดและเติมแอนติบอดีทุติยภูมิที่ติดฉลาก HRP หรือสารเรืองแสงที่มีความจำเพาะต่อชนิดของแอนติบอดีปฐมภูมิ
การตรวจวัดและวิเคราะห์: ฉายแสงกับสาร ECL หรือเก็บค่าสัญญาณเรืองแสง โดยต้องรักษาให้สัญญาณอยู่ในช่วงที่เป็นเส้นตรง (linear range) และคำนวณปริมาณเทียบกับโหลดดิ้งคอนโทรลหรือโปรตีนรวม ทั้งนี้ควรรายงานค่าที่ผ่านการทำ normalization เสมอสำหรับการเปรียบเทียบข้ามเลนหรือข้ามการทดลอง
เคล็ดลับแนะนำ
- เลือกความเข้มข้นของเจลให้เหมาะกับขนาดโปรตีนเป้าหมาย: ใช้ 8-10% สำหรับโปรตีนขนาดใหญ่ (100+ kDa) และ 12-15% สำหรับโปรตีนขนาดเล็กต่ำกว่า 30 kDa
- กำจัดฟองอากาศในชุด transfer ให้หมดเพื่อป้องกันการ capture โปรตีนที่ไม่สม่ำเสมอ
- ใช้ BSA แทนการใช้นมผงสำหรับ phospho-specific antibody เพราะนมมีเคซีน (casein) ซึ่งเป็นฟอสโฟโปรตีนที่อาจรบกวนสัญญาณ
- ปรับความเข้มข้นของ Tween-20 ในบัฟเฟอร์ที่ใช้ล้าง: หากน้อยเกินไปจะเหลือสัญญาณรบกวนพื้นหลัง แต่หากมากเกินไปจะทำให้แอนติบอดีหลุดออก
- ทำการบันทึกภาพแบบ bracket (เวลาสั้น, กลาง, ยาว) เพื่อหาช่วงสัญญาณที่เป็นเส้นตรงก่อนตัดสินใจทำ quantification
- เก็บสต็อกแอนติบอดีเป็นชุดสำหรับการใช้ครั้งเดียว (aliquots) ที่อุณหภูมิที่แนะนำเพื่อคงสภาพการใช้งานในระยะยาว
| ความเข้มข้นของเจล (%) | ช่วงที่แยกได้ (kDa) | สภาวะการ Transfer | Transfer Buffer ทั่วไป | เวลาในการ Blocking |
|---|---|---|---|---|
| 6-8% | 100-250 kDa | แบบ Wet tank แนะนำ | 25 mM Tris, 192 mM glycine, 20% methanol | 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง |
| 10% | 30-100 kDa | Wet tank หรือ semi-dry | 25 mM Tris, 192 mM glycine, 20% methanol | 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง |
| 12% | 15-70 kDa | Semi-dry หรือ wet tank | 25 mM Tris, 192 mM glycine, 10-20% methanol | 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง |
| 15% | 10-40 kDa | Semi-dry, transfer สั้น | 25 mM Tris, 192 mM glycine, 10% methanol | 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง |
ส่วนประกอบสำคัญ: เมมเบรน แอนติบอดี และ Detection Chemistries
เมมเบรน
PVDF มีความแข็งแรงเชิงกลสูงและมีความสามารถในการจับโปรตีนได้มาก จึงเหมาะสำหรับเป้าหมายที่มีปริมาณน้อยและการนำกลับมาตรวจสอบใหม่ (stripping and reprobing) ในขณะที่ nitrocellulose มีสัญญาณรบกวนต่ำและใช้งานง่าย เหมาะสำหรับงานที่เน้นอัตราส่วนสัญญาณต่อสัญญาณรบกวน (signal-to-noise) ส่วนเมมเบรน Nylon มักไม่นิยมใช้สำหรับการทำโปรตีนบล็อตเนื่องจากมีการจับแบบไม่จำเพาะสูง
คู่มือเลือกเมมเบรน
- เป้าหมายปริมาณน้อยที่ต้องการความสามารถในการจับสูง
- รองรับการล้างและตรวจสอบใหม่หลายรอบ
- รองรับการตรวจวัดแบบเคมีเรืองแสงและฟลูออเรสเซนต์
- ต้องแช่เมทานอลก่อนใช้งาน
- เป้าหมายที่มีปริมาณมากโดยเน้นสัญญาณรบกวนต่ำ
- ใช้งานง่ายและรวดเร็ว ไม่ต้องแช่เมทานอล
- เหมาะสำหรับการตรวจวัดแบบคัลเลอริเมตริก
- เปราะบางกว่า ไม่เหมาะกับการล้างซ้ำหลายครั้ง
- สำหรับการทำ blotting กรดนิวคลีอิก
- ไม่แนะนำสำหรับโปรตีนเวสเทิร์นบล็อตเนื่องจากมีสัญญาณรบกวนสูง
ผลิตภัณฑ์ Immobilon Transfer Membranes จาก Merck มีให้เลือกทั้งแบบ PVDF และ nitrocellulose การเลือกเมมเบรนที่ถูกต้องตั้งแต่เริ่มต้นจะช่วยป้องกันการสูญเสียสัญญาณหรือปัญหาพื้นหลังที่แก้ไขได้ยากในภายหลัง
แอนติบอดี
Monoclonal antibodies จดจำเอพิโทปเพียงจุดเดียว จึงให้ความจำเพาะสูงและประสิทธิภาพสม่ำเสมอในแต่ละล็อต ซึ่งเป็นทางเลือกที่นิยมหากเป้าหมายของคุณมีการจำแนกลักษณะชัดเจน ส่วน Polyclonal antibodies จดจำหลายเอพิโทป ทำให้ทนต่อการสูญเสียเอพิโทปจากการทำลายโครงสร้างด้วย SDS ได้ดีกว่า
ตรวจสอบความจำเพาะของสปีชีส์ (species reactivity), ความเป็นโคลน (clonality), การประยุกต์ใช้งาน และระดับการเจือจางที่ผู้ผลิตแนะนำเสมอ สำหรับ Merck Monoclonal Antibodies ให้ความแม่นยำสูงและจำเพาะต่อเป้าหมายที่ได้รับการรับรอง ในขณะที่ Merck Polyclonal Antibodies ให้ความแข็งแกร่งในการตรวจจับที่ครอบคลุมกว่าแม้โปรตีนจะเสียสภาพไปบางส่วน
Detection Chemistries
สาร ECL ที่มี HRP เป็นองค์ประกอบมีความไวหลากหลายระดับ โดย ECL มาตรฐานเหมาะสำหรับโปรตีนที่มีปริมาณมาก ส่วนสารที่ปรับปรุงพิเศษจะช่วยขยายขีดความสามารถในการตรวจวัดโปรตีนที่มีปริมาณน้อยได้ สำหรับสารละลาย alkaline phosphatase จะให้สัญญาณที่เสถียรเหมาะกับงานเชิงสี ส่วน Near-infrared fluorescence จะช่วยให้สามารถวิเคราะห์เป้าหมายหลายตัวพร้อมกันบนเมมเบรนเดียวกันด้วยช่วงไดนามิกที่กว้างและสัญญาณรบกวนต่ำ
ผลิตภัณฑ์ Immunodetection Reagents & Substrates จาก Merck ทำงานร่วมกับแอนติบอดีที่ผ่านการรับรองเพื่อผลลัพธ์ที่เป็นเคมีเรืองแสงสม่ำเสมอ ลดความผันแปรจากการผสมรีเอเจนต์ต่างยี่ห้อกัน ดูภาพรวมของอุปกรณ์เสริมและผลิตภัณฑ์เพิ่มเติมได้ที่หน้า Protein Electrophoresis and Western Blotting
วางแผนคลังสารเคมีให้ครอบคลุมทั้งสาร Blocking (นมผงและ BSA), Tween-20, Ponceau S สำหรับการตรวจสอบ, สารย้อมโปรตีนรวม และสาร ECL อย่างน้อยสองเกรดเพื่อรองรับการใช้งานทั้งโปรตีนปริมาณมากและน้อย
การประยุกต์ใช้งานและแนวทางการแก้ไขปัญหา
เมื่อใดที่ควรเลือกใช้ Western blot
Western blot เป็นวิธีที่เหมาะสมเมื่อคุณต้องการยืนยันทั้งน้ำหนักโมเลกุลและความจำเพาะต่อแอนติบอดีพร้อมกัน การใช้งานทั่วไปรวมถึงการยืนยันการแสดงออกของโปรตีนหลังการทำ transfection หรือ CRISPR, การตรวจสอบการกระตุ้นของวิถีทางชีวภาพด้วยแอนติบอดีเฉพาะจุด, การจำแนกไอโซฟอร์มของโปรตีน และการยืนยันความจำเพาะของแอนติบอดีหลังจากการทำ immunoprecipitation
สำหรับการหาปริมาณที่แม่นยำมากในตัวอย่างจำนวนมาก ELISA หรือแมสสเปกโทรเมทรี (mass spectrometry) จะเป็นทางเลือกที่ดีกว่า แต่ western blot ยังคงเป็นมาตรฐานในการยืนยันความจำเพาะและการเปรียบเทียบเชิงกึ่งปริมาณ
การควบคุมคุณภาพและการทำ Normalization
ใส่กลุ่มทดสอบเชิงบวก (ตัวอย่างที่ทราบว่ามีการแสดงออกของเป้าหมาย) และเชิงลบ (lysate จากเซลล์ที่ไม่มีเป้าหมาย) ในทุกการรัน ตรวจสอบความสมบูรณ์ของการ transfer ด้วย Ponceau S หรือสีย้อมโปรตีนรวมก่อนทำ blocking ทำ normalization ของระดับความเข้มข้นแถบโปรตีนเทียบกับ housekeeping protein ที่เสถียร หรือเทียบกับปริมาณโปรตีนรวม
แนวทางการแก้ไขปัญหาทั่วไป
| อาการที่พบ | สาเหตุที่เป็นไปได้ | วิธีแก้ไขแนะนำ |
|---|---|---|
| ไม่พบแถบโปรตีน | Transfer ล้มเหลว, เจือจางแอนติบอดีผิด, สปีชีส์ไม่เข้ากัน | ตรวจสอบการ transfer ด้วย Ponceau S; เช็คสปีชีส์ของแอนติบอดี |
| แถบจางหรืออ่อนมาก | โหลดโปรตีนน้อย, บันทึกภาพสั้นเกินไป, แอนติบอดีเสื่อม | เพิ่มปริมาณโปรตีนหรือเวลาบันทึกภาพ; ตรวจสอบสารเคมี |
| แถบเป็นรอยเปื้อน (Smeared) | โปรตีนเสื่อมสภาพ, โหลดเยอะเกิน, รันเจลเร็วไป | เติม protease inhibitor; ลดปริมาณโปรตีน; ลดแรงดันที่ใช้ |
| Transfer ไม่สม่ำเสมอ | มีฟองอากาศ, การสัมผัสไม่ดี, กระแสไม่ทั่ว | ประกอบ stack ใหม่ให้ไร้ฟองอากาศ; เช็คหน้าสัมผัสอิเล็กโทรด |
| สัญญาณพื้นหลังสูง | Blocking ไม่พอ, ล้างไม่สะอาด, แอนติบอดีเข้มข้นไป | เพิ่มเวลา blocking; ล้างด้วยปริมาณที่มากขึ้น; เจือจางแอนติบอดีเพิ่ม |
| แถบแปลกปลอม | แอนติบอดีจับแบบไม่จำเพาะ, โปรตีนรวมตัวกัน | เพิ่มความเข้มข้นของการล้าง; เลือกแอนติบอดีที่จำเพาะมากขึ้น |
การใช้ชุดรีเอเจนต์และอุปกรณ์จาก Merck Protein Electrophoresis & Western Blotting จะช่วยลดตัวแปรที่ไม่จำเป็นในการทดลอง ทำให้การหาสาเหตุของปัญหาทำได้รวดเร็วยิ่งขึ้น
สรุปสำหรับการวางแผนห้องแล็บ
western blot principle คือการผสมผสานการแยกโปรตีนด้วย SDS-PAGE เข้ากับการตรวจจับด้วยแอนติบอดีบนเมมเบรนเพื่อให้ได้ผลการวิเคราะห์ที่จำเพาะ การออกแบบการควบคุมที่ดีและการทำ normalization ที่ถูกต้องจะช่วยให้ผลการทดลองมีความน่าเชื่อถือและเปรียบเทียบกันได้
การเลือกเมมเบรนและแอนติบอดีส่งผลโดยตรงต่อระดับสัญญาณรบกวนและความไวในการตรวจวัด เลือก PVDF สำหรับงานที่ต้องการความสามารถในการจับสูง และใช้ nitrocellulose สำหรับความเรียบง่ายและสัญญาณพื้นหลังต่ำ เลือกใช้แอนติบอดีที่เหมาะสมกับเป้าหมาย และเลือกวิธีการตรวจวัดที่เข้ากับปริมาณโปรตีนของคุณ
การวางแผนการทำงานตั้งแต่เจลจนถึงการตรวจวัดด้วยรีเอเจนต์ที่ผ่านการรับรองและเข้ากันได้ เป็นวิธีที่ดีที่สุดในการผลิตข้อมูลที่แม่นยำเพื่อสนับสนุนการตัดสินใจที่มั่นใจและการตีพิมพ์ผลงานวิจัย
คำถามที่พบบ่อย
ผลิตภัณฑ์ที่แนะนำ
ผลิตภัณฑ์ทั้งหมดด้านล่างจัดจำหน่ายผ่าน Chemical Express Thailand ส่งคำถาม สำหรับราคา ความพร้อมจำหน่าย หรือคำแนะนำทางเทคนิค
ผลิตภัณฑ์แนะนำจาก Chemical Express
เราจัดส่งผลิตภัณฑ์ Western Blot จาก Merck, TCI, MedChemExpress (MCE) และ Elabscience และแบรนด์ชั้นนำระดับสากลอื่นๆ หลากหลายชนิดทั่วประเทศไทย สอบถามหรือสั่งซื้อได้ผ่านแบบฟอร์มสอบถาม หรือพูดคุยกับเราได้ทันทีทาง LINE