Cytotoxicity Assay คืออะไร? วิธีวัดความเป็นพิษต่อเซลล์ในงานวิจัย

คุณมีสารประกอบที่พร้อมสำหรับการทดสอบแล้ว แต่การเลือกรูปแบบ assay ที่ไม่เหมาะสมอาจทำให้ได้ค่า IC50 ที่คลาดเคลื่อน หรือล้มเหลวโดยสิ้นเชิงหากสารประกอบที่มีสีรบกวนการทำงานของสีเคมี การเลือกระหว่าง MTT, WST-8, LDH, ATP และวิธี Imaging นั้นไม่ใช่เรื่องง่ายเมื่อคุณต้องจัดการทั้งปริมาณงาน (throughput), แบบจำลองเซลล์ (cell model) และการเข้าถึงเครื่องมือ บทความนี้จะอธิบายว่า cytotoxicity assay คืออะไร แต่ละวิธีหลักทำงานอย่างไร และวิธีเลือกสิ่งที่เหมาะสมที่สุดสำหรับการทดลองของคุณ

Cytotoxicity assay คืออะไรและวัดค่าอะไรบ้าง?

Cytotoxicity assay คือการทดสอบเชิงปริมาณที่ใช้วัดความเสียหายหรือการสูญเสียความมีชีวิตของเซลล์หลังจากได้รับสารเคมี สารชีวภาพ วัสดุ หรือสารสกัด โดยจะติดตามทั้งการลดลงของตัวบ่งชี้เซลล์ที่มีชีวิต หรือการเพิ่มขึ้นของตัวบ่งชี้เซลล์ที่ตายแล้ว เพื่อให้ได้ค่าตัวเลขที่สะท้อนถึงความเป็นพิษของการทดลองที่ความเข้มข้นต่างๆ

ตัวบ่งชี้ปลายทาง (endpoint) ที่พบบ่อย ได้แก่ กิจกรรมทางเมตาบอลิซึม, ความสมบูรณ์ของเยื่อหุ้มเซลล์ และระดับ ATP โดยค่าที่อ่านได้จะถูกนำมาพล็อตตามชุดความเข้มข้นเพื่อสร้างกราฟการตอบสนองต่อปริมาณสาร (dose-response curves) ซึ่งนำไปใช้คำนวณค่า IC50 หรือ EC50 เพื่อช่วยในการคัดกรองสาร (hit triage), การจัดอันดับความปลอดภัย และการตัดสินใจเกี่ยวกับความเข้ากันได้ของวัสดุ

Cytotoxicity assay สามารถใช้ได้ทั้งกับแบบจำลอง 2D monolayers และ 3D spheroids ในงานวิจัยพัฒนายา, การควบคุมคุณภาพ และการทดสอบความเข้ากันได้ทางชีวภาพ (biocompatibility) การวัดสามารถทำได้ที่จุดปลายทางจุดเดียวหรือติดตามแบบ Real-time ขึ้นอยู่กับเคมีของ assay และเครื่องมือที่มี หากต้องการมุมมองที่กว้างขึ้นเกี่ยวกับบทบาทของ assay เหล่านี้ในขั้นตอนการทำงานที่เกี่ยวข้องกับเซลล์ โปรดดูผลิตภัณฑ์กลุ่ม Cell Culture Analysis

Cytotoxicity assay ทำงานอย่างไร: แบบจำลอง, สัญญาณที่ตรวจวัด และการควบคุม

โหมดการตรวจจับและสัญญาณ

เคมีของแต่ละ assay จะวัดเหตุการณ์ทางชีวภาพที่แตกต่างกัน Assay กลุ่ม Tetrazolium reduction จะรายงานกิจกรรมทางเมตาบอลิซึม, การรั่วไหลของ LDH จะรายงานความเสียหายของเยื่อหุ้มเซลล์, สัญญาณเรืองแสง (luminescence) ของ ATP จะรายงานสถานะพลังงาน และสีย้อมที่ใช้สำหรับการถ่ายภาพ (imaging-based dyes) จะรายงานจำนวนนิวเคลียสของเซลล์ที่ตายแล้วหรือเซลล์ทั้งหมดในระดับเซลล์เดี่ยว

วิธีตัวบ่งชี้ทางชีวภาพประเภทสัญญาณความยาวคลื่น / การตรวจจับความเข้ากันได้ของรูปแบบ
MTTกิจกรรมทางเมตาบอลิซึมการดูดกลืนแสง (Absorbance)570 nm2D monolayer
WST-8 / CCK-8กิจกรรมทางเมตาบอลิซึมการดูดกลืนแสง (Absorbance)450 nm2D, 3D spheroids
LDH releaseความสมบูรณ์ของเยื่อหุ้มเซลล์การดูดกลืนแสง / ฟลูออเรสเซนซ์490 nm (colorimetric)2D, การสุ่มตัวอย่างจาก supernatant
ATP luminescenceสถานะพลังงานการเรืองแสง (Luminescence)Broadband luminescence2D, เซลล์จำนวนน้อย, 3D
Live-cell imagingนิวเคลียส / สีย้อมเซลล์ตายฟลูออเรสเซนซ์หลายช่องสัญญาณ2D, 3D, kinetic

สีย้อม Tetrazolium อย่าง MTT และ WST-8 อาศัยการทำงานของ reductase ภายในเซลล์ โดย WST-8 จะเปลี่ยนสภาพเป็นผลิตภัณฑ์ formazan ที่ละลายน้ำได้ ซึ่งช่วยลดขั้นตอนการละลายที่จำเป็นใน MTT และช่วยให้ขั้นตอนการทำงานง่ายขึ้นในกรณีที่ใช้เพลทความหนาแน่นสูง

LDH ที่ปล่อยออกมาในสื่อเพาะเลี้ยงสามารถวัดค่าเชิงสี (colorimetrically) ได้จาก supernatant ทำให้สามารถสุ่มตัวอย่างโดยไม่ทำลายเซลล์ จึงทำให้ LDH เป็นตัวเลือกที่เหมาะสมสำหรับการวัดร่วม (multiplexing) กับค่าอื่นๆ ในเพลท รวมถึงการใช้ Merck assay kits for metabolite and enzyme analysis เมื่อคุณต้องการติดตามการเปลี่ยนแปลงของเมตาบอลิซึมควบคู่ไปกับการตายของเซลล์

ATP luminescence ใช้ปฏิกิริยาที่อาศัย luciferase ซึ่งสัญญาณจะมีความสัมพันธ์โดยตรงกับจำนวนเซลล์ที่มีชีวิต ให้ความไวสูงและช่วงไดนามิกที่กว้าง พร้อมเวลาในการบ่มสั้นซึ่งเหมาะสำหรับแคมเปญการคัดกรองที่จำกัดเรื่องเวลาหรือสายพันธุ์เซลล์ที่มีกระบวนการเมตาบอลิซึมต่ำ

วิธีที่อาศัยการถ่ายภาพโดยใช้ Live Cell Imaging Reagents ช่วยให้เห็นความละเอียดในระดับเซลล์เดี่ยวทั่วทั้งหลุมเพาะเลี้ยง ทำให้คุณสามารถแยกผลยับยั้งการแบ่งตัวของเซลล์ (cytostatic effects) ออกจากการตายของเซลล์จริงๆ ได้ และช่วยวัดความหลากหลายของประชากรเซลล์ที่ค่าเฉลี่ยจากเครื่องอ่านเพลทอาจมองข้ามไป

การควบคุมและการออกแบบเพลท

การควบคุมที่จำเป็น: ทุกเพลทต้องมีการทดสอบเซลล์ที่ไม่ได้รับสาร, การทดสอบ Vehicle-only, การทดสอบ positive kill control (เช่น 1% Triton X-100 หรือ staurosporine) และตัวทำปฏิกิริยาเปล่าที่ไม่มีเซลล์ ควรปรับมาตรฐานค่า (normalize) ในหลุมทดสอบเทียบกับ vehicle, ลบสัญญาณของตัวเปล่า และแสดงผลข้อมูลเป็นร้อยละของความมีชีวิตหรือร้อยละความเป็นพิษ

วางแผนผังเพลทของคุณโดยใช้การสุ่มตำแหน่งเพื่อลดผลกระทบที่ขอบ (edge effects) หลุมรอบนอกสามารถเติมบัฟเฟอร์ได้หากตู้บ่มเพาะของคุณมีการไล่ระดับอุณหภูมิที่ชัดเจนที่ขอบเพลท

ตรวจสอบค่าการอ่าน (reader settings), อัตราขยาย (gain) และการรับแสงก่อนเริ่มการทำงานจริง สำหรับการออกแบบเชิงจลนศาสตร์ (kinetic) ควรทำการวัดพื้นฐานทันทีหลังจากเติมสารประกอบ แล้วจึงติดตามจุดเวลาหลังการรักษาเพื่อตรวจหาความเป็นพิษที่เกิดขึ้นล่าช้าซึ่งการวัดที่จุดปลายทางเพียงจุดเดียวอาจพลาดไปได้ คำนวณค่า Z-prime จากหลุมควบคุมเพื่อยืนยันคุณภาพของ assay ก่อนเริ่มขยายขนาดการคัดกรอง

การเลือกวิธี cytotoxicity ที่เหมาะสมสำหรับการทดลองของคุณ

ไม่มีวิธี assay ใดที่เหมาะกับทุกสถานการณ์ ควรเลือกวิธีให้เหมาะสมกับชนิดของเซลล์, ประเภทของสารประกอบ, สีของแมทริกซ์, เครื่องมือที่มี และดูว่าคุณต้องการค่าปลายทางเพียงค่าเดียวหรือต้องการข้อมูลเชิงจลนศาสตร์ พิจารณาด้วยว่าผลการวัดจำเป็นต้องทำร่วมกับ marker ของการตายแบบ apoptosis หรือโปรตีนก่อนที่จะเลือกว่าจะใช้รูปแบบใด

คู่มือการตัดสินใจเลือกวิธี cytotoxicity assay

MTT
  • มีโปรโตคอลที่ผ่านการตรวจสอบในห้องปฏิบัติการแล้ว
  • ปริมาณงานต่ำ, แบบจำลอง 2D monolayer
  • สารประกอบไม่มีสีและมีกิจกรรม redox ต่ำ
WST-8 / CCK-8
  • การคัดกรองปริมาณงานสูงใน 96 หรือ 384 หลุม
  • 3D spheroids ที่การแพร่ของผลึก MTT มีข้อจำกัด
  • ขั้นตอนการทำงานที่ไม่ต้องการให้ขั้นตอนการละลายทำให้กระบวนการช้าลง
LDH Release
  • การจำแนกลักษณะ necrosis และการประเมินความเสียหายของเยื่อหุ้มเซลล์
  • การสุ่มตัวอย่างจาก supernatant สำหรับการวัดหลายค่า
  • การอ่านค่าโดยไม่ทำลายเซลล์ในหลุมเดิม
ATP Luminescence
  • กรณีเซลล์มีจำนวนน้อยหรือสายพันธุ์ที่มีกระบวนการเมตาบอลิซึมต่ำ
  • ข้อจำกัดด้านเวลาบ่มสั้นในการคัดกรองที่รวดเร็ว
  • ต้องการความไวสูงและช่วงไดนามิกที่กว้าง
Live-Cell Imaging
  • แยกแยะผลยับยั้งการแบ่งตัวจากผลความเป็นพิษ
  • การติดตามการเริ่มต้นของความเป็นพิษแบบจลนศาสตร์
  • การเก็บข้อมูลความแปรปรวนระหว่างเซลล์ในหลุมเดียว
วิธีเครื่องมือที่จำเป็นความสามารถเชิงจลนศาสตร์ใช้งานกับ 3D ได้ความเสี่ยงต่อการรบกวน
MTTเครื่องอ่านการดูดกลืนแสงไม่จำกัดสูง (สารประกอบมีสี / สาร redox)
WST-8 / CCK-8เครื่องอ่านการดูดกลืนแสงบางส่วนใช่ปานกลาง
LDH releaseเครื่องอ่านการดูดกลืนแสง / ฟลูออเรสเซนซ์บางส่วนใช่ต่ำถึงปานกลาง
ATP luminescenceเครื่องอ่านสัญญาณเรืองแสงไม่ (ต้องทำ lysis)ใช่ต่ำ
Live-cell imagingเครื่องถ่ายภาพฟลูออเรสเซนซ์ใช่ใช่ต่ำ (ขึ้นอยู่กับช่องสัญญาณ)
คำเตือนเรื่องสีย้อมรบกวน: สารประกอบที่มีสี, สารที่ออกฤทธิ์ redox และ phenol red ในสื่อเพาะเลี้ยงมาตรฐานสามารถส่งผลต่อการอ่านค่าการดูดกลืนแสงในการทดสอบ tetrazolium ได้ ควรเปลี่ยนไปใช้สื่อเพาะเลี้ยงที่ไม่มี phenol red ก่อนทำ MTT หรือ WST-8/CCK-8 และตรวจสอบด้วยวิธีอื่นที่แตกต่าง (orthogonal) เช่น ATP luminescence หรือการถ่ายภาพ เพื่อยืนยันว่าผลลัพธ์ไม่ใช่ค่าที่ผิดพลาด (artifact)

การประยุกต์ใช้งานและการออกแบบการทดลองทั่วไป

ในการคัดกรองสารโมเลกุลขนาดเล็ก Cytotoxicity assay จะช่วยจัดลำดับความแรงของสารประกอบและบ่งชี้ช่องว่างของความจำเพาะต่อเซลล์ที่ไม่ใช่เป้าหมาย สำหรับโปรแกรม Antibody-drug conjugate หรือ nanoparticle การสังเกตเชิงจลนศาสตร์ในช่วง 48 ถึง 72 ชั่วโมงช่วยให้บันทึกความเป็นพิษที่เกิดขึ้นล่าช้า ซึ่ง assay ที่วัดเพียงปลายทางอาจพลาดไป

การทดสอบความเข้ากันได้ทางชีวภาพของวัสดุ (biocompatibility) และการทดสอบสารสกัดหรือสารชะจากพลาสติก, ฟิลเตอร์ และท่อ ต่างก็อาศัย Cytotoxicity assay ที่มีรูปแบบเพลทที่สม่ำเสมอและเกณฑ์ผ่าน/ไม่ผ่านที่ชัดเจน การควบคุมคุณภาพในงานอาหารและเภสัชกรรมก็มีข้อกำหนดเรื่องความสามารถในการทำซ้ำและการบันทึกเอกสารเช่นเดียวกัน

เมื่อกลไกมีความสำคัญ ควรวางแผนการทดสอบเพื่อยืนยันด้วยวิธีอื่น การจับคู่ค่าความมีชีวิตเบื้องต้นกับตัวบ่งชี้การตายแบบ apoptosis หรือโปรตีนที่หลั่งออกมาผ่าน immunoassay platform หรือโดยการวิเคราะห์ proteins and enzymes ที่เกี่ยวข้อง จะเพิ่มบริบทเชิงกลไกที่ตัวเลขความมีชีวิตเพียงค่าเดียวไม่สามารถบอกได้

การตั้งค่าและแก้ปัญหาเพื่อข้อมูล cytotoxicity ที่น่าเชื่อถือ

ความหนาแน่นของการเพาะเซลล์ (seeding density) เป็นสาเหตุที่พบบ่อยที่สุดของสัญญาณที่ไม่อยู่ในช่วงที่กำหนด หากเซลล์น้อยเกินไปจะทำให้ค่าการอ่านเข้าใกล้พื้นหลังสัญญาณรบกวน (noise floor) แต่ถ้ามากเกินไปจะทำให้สัญญาณอิ่มตัวและบีบอัดกราฟการตอบสนองต่อปริมาณสาร ควรออปติไมซ์ความหนาแน่นเพื่อให้หลุมทดสอบทั้งหมดอยู่ในช่วงเชิงเส้นของเส้นมาตรฐานก่อนทำการทดลอง

การควบคุมตัวทำละลาย (solvent control) มีความสำคัญในทุกขั้นตอน ควรรักษาระดับ DMSO ให้อยู่ที่หรือต่ำกว่า 0.1 ถึง 0.5% ขึ้นอยู่กับแบบจำลองเซลล์ของคุณ และตรวจสอบให้แน่ใจว่าสัญญาณการควบคุม vehicle ไม่แตกต่างจากเซลล์ปกติเกิน 10 ถึง 15% ความเข้มข้นของตัวทำละลายที่สูงขึ้นจะส่งผลต่อ cytotoxicity ของตัวเองและทำให้ความแรงของสารประกอบดูสูงเกินจริง

เคล็ดลับด่วน

  • 96-well plates: เพาะเซลล์ 2,000 ถึง 10,000 เซลล์ต่อหลุมขึ้นอยู่กับระยะเวลาการเพิ่มจำนวน (doubling time); 384-well plates มักต้องใช้ 500 ถึง 2,000 เซลล์ต่อหลุม
  • ใช้สื่อเพาะเลี้ยงที่ไม่มี phenol red สำหรับการทดสอบด้วย tetrazolium และการดูดกลืนแสงเพื่อขจัดสัญญาณรบกวนพื้นหลัง
  • สำหรับ WST-8/CCK-8: บ่ม 1 ถึง 4 ชั่วโมงและอ่านที่ 450 nm โดยใช้ 650 nm เป็นตัวอ้างอิง; ขยายเวลาเป็น 4 ถึง 6 ชั่วโมงสำหรับโมเดล 3D หรือเซลล์ที่เมตาบอลิซึมช้า
  • สำหรับ LDH assays: หลีกเลี่ยงการแช่แข็งและละลาย (freeze-thaw) ของ supernatant และรักษาเวลาการบ่มให้สม่ำเสมอในทุกเพลท
  • ปรับสมดุลเพลทที่อุณหภูมิห้องอย่างน้อย 15 นาทีก่อนอ่านสัญญาณ luminescence เพื่อให้สัญญาณพื้นหลังคงที่
  • ตั้งค่าอัตรารับแสง (gain) ของเครื่องอ่านโดยใช้หลุมควบคุมที่เป็น positive control ระดับกลาง ไม่ใช่ที่สัญญาณสูงสุด เพื่อหลีกเลี่ยงการอิ่มตัวที่ความเข้มข้นสารประกอบต่ำ

ปรับค่าข้อมูลเข้ากับ vehicle control, ลบค่าการดูดกลืนแสงหรือค่าการเรืองแสงของตัวเปล่า และสร้างแบบจำลอง logistic สี่พารามิเตอร์ (4PL) ให้กับข้อมูลการตอบสนองต่อปริมาณสาร รายงานค่า IC50 พร้อมช่วงความเชื่อมั่น 95% และระบุจำนวนของการทดลองซ้ำ (independent replicates) ตรวจสอบค่าที่ผิดปกติ (outlier) ในแต่ละหลุมก่อนสรุปการสร้างกราฟ

การวัดหลายค่า (Multiplexing) จะเพิ่มความหนาแน่นของข้อมูลโดยไม่ต้องเพิ่มจำนวนหลุม LDH ที่วัดจาก supernatant สามารถวัดก่อนการอ่านค่า ATP หรือ WST-8 จากหลุมเดียวกันได้เมื่อมีการจัดลำดับขั้นตอนการบ่มและ lysis ที่ถูกต้อง ควรวางแผนลำดับก่อนเริ่มเพื่อให้การวัดครั้งแรกไม่รบกวนครั้งที่สอง

ใช้อุปกรณ์ Cell Counting Equipment เพื่อตรวจสอบความแม่นยำในการเพาะเซลล์และตรวจสอบความมีชีวิตเบื้องต้นด้วย trypan blue หรือสีย้อมฟลูออเรสเซนซ์เมื่อสัญญาณ assay มีความคลุมเครือ การนับจำนวนที่แม่นยำตั้งแต่เริ่มต้นจะช่วยขจัดตัวแปรสำคัญได้หนึ่งประการก่อนที่จะเติมสารประกอบ

สำหรับแมทริกซ์โปรตีนที่ซับซ้อนหรือสารสกัดทางชีวภาพ ควรวางแผนขั้นตอนการเจือจางและการจัดการตัวอย่างเพื่อลดผลกระทบจากแมทริกซ์ก่อนการทดสอบเซลล์ ควรบันทึกความแตกต่างระหว่าง Lot ของวัสดุทดสอบทางชีวภาพเนื่องจากการแปรปรวนของ batch อาจเปลี่ยนการตอบสนองพื้นฐานโดยไม่เกี่ยวข้องกับผลของสารประกอบ สำหรับการยืนยันระดับโปรตีนในขั้นตอนถัดไป โปรโตคอลการเตรียมตัวอย่างโปรตีน protein sample preparation จะช่วยให้มั่นใจได้ว่าคุณภาพของตัวอย่างตั้งต้นมีความสม่ำเสมอก่อนการทดสอบในขั้นตอนถัดไป

สรุปและขั้นตอนถัดไป

Cytotoxicity assay คือการวัดปริมาณว่าการทดสอบส่งผลต่อความมีชีวิตของเซลล์อย่างไรผ่านกิจกรรมทางเมตาบอลิซึม, ความสมบูรณ์ของเยื่อหุ้มเซลล์, สถานะ ATP หรือการถ่ายภาพ วิธีที่ดีที่สุดขึ้นอยู่กับแบบจำลองเซลล์, คุณสมบัติของสารประกอบ และเครื่องมือที่คุณมี ไม่มีวิธีใดที่ดีที่สุดในทุกสถานการณ์ แต่ละวิธีมีข้อดีข้อเสียระหว่างความไว, ปริมาณงาน และความเสี่ยงจากการรบกวน

วางแผนการควบคุมที่แข็งแกร่งตั้งแต่เริ่มต้น, ตรวจสอบความถูกต้องของสัญญาณก่อนขยายขนาด และจับคู่ผลการวัดหลักกับวิธีอื่นที่เหมาะสมเมื่อความจำเพาะหรือกลไกเป็นส่วนหนึ่งของการตัดสินใจ การรวมวิธีเหล่านี้จะช่วยให้คุณได้ข้อมูลที่สามารถสนับสนุนการตัดสินใจได้ในทุกขั้นตอนของโครงการ

คำถามที่พบบ่อย

ฉันควรเลือก MTT หรือ WST-8/CCK-8 เมื่อไหร่?
เลือก WST-8/CCK-8 เมื่อคุณต้องการขั้นตอนการทำงานที่เร็วขึ้น, ปริมาณงานที่สูงขึ้น หรือทำงานกับวัฒนธรรมเซลล์แบบ 3D spheroid ซึ่งการแพร่ของผลึก MTT กลายเป็นข้อจำกัด MTT ยังคงเป็นตัวเลือกที่ถูกต้องหากห้องปฏิบัติการของคุณมีโปรโตคอลที่ผ่านการตรวจสอบแล้ว และสารประกอบของคุณไม่รบกวนการทดสอบ ความแตกต่างที่สำคัญในเชิงปฏิบัติคือ WST-8 ข้ามขั้นตอนการละลาย ซึ่งช่วยประหยัดเวลาในการคัดกรองขนาดใหญ่
ฉันสามารถทำ cytotoxicity assays ในสื่อเพาะเลี้ยงที่มีซีรัมและ phenol red ได้หรือไม่?
ได้ แต่ควรตรวจสอบค่าการดูดกลืนแสงพื้นหลังและโอกาสการรบกวนก่อนที่จะถือว่าเป็นสภาวะปกติ Phenol red จะเลื่อนค่าการดูดกลืนแสงในช่วง 450 ถึง 500 nm และอาจทำปฏิกิริยากับสารบางชนิด โปรตีนในซีรัมยังอาจส่งผลต่อสัญญาณของ assay ที่อาศัยเอนไซม์ การเปลี่ยนไปใช้สื่อเพาะเลี้ยงที่ไม่มี phenol red และยืนยันด้วยผลลัพธ์จากการทดสอบแบบอื่น (orthogonal) เป็นวิธีที่น่าเชื่อถือที่สุดในการตัดผลลัพธ์ที่เป็นลวง
ฉันจะจัดการกับสารประกอบที่มีสีหรือสาร redox-active ที่ทำให้ผลการดูดกลืนแสงผิดเพี้ยนได้อย่างไร?
ควรมีหลุมอ้างอิงที่มีสารประกอบบวกกับตัวทำปฏิกิริยาแต่ไม่มีเซลล์ จากนั้นนำค่าเหล่านั้นมาลบออกจากหลุมเซลล์ที่ผ่านการทดสอบเพื่อชดเชยสีของสารประกอบ หรือเปลี่ยนไปใช้ ATP luminescence หรือวิธีที่อาศัยการถ่ายภาพ ซึ่งจะไม่ได้รับผลกระทบจากการดูดกลืนแสงของสารประกอบ ควรยืนยันผลลัพธ์ที่กำกวมด้วยวิธีที่สองที่แตกต่างเสมอก่อนสรุปผล
3D spheroids เข้ากันได้กับ cytotoxicity assays หรือไม่?
ได้ แต่การเลือกวิธีมีความสำคัญใน 3D มากกว่า 2D ควรเลือกเคมีที่เอื้อต่อการแพร่ (diffusion-friendly) เช่น WST-8/CCK-8 หรือวิธีที่อาศัยการถ่ายภาพซึ่งสามารถแทรกซึมเข้าไปในโครงสร้าง spheroid ได้ และควรเพิ่มเวลาในการบ่มเพื่อให้ตัวทำปฏิกิริยาแพร่กระจายได้อย่างเพียงพอ ยืนยันว่าสัญญาณยังคงอยู่ในช่วงเชิงเส้นตลอดช่วงการกระจายตัวของขนาด spheroid ที่ใช้ในการทดลองของคุณ
วิธีที่ดีที่สุดในการคำนวณ IC50 จาก cytotoxicity assay คืออะไร?
ปรับค่าข้อมูลของหลุมทดสอบทั้งหมดเทียบกับ vehicle control (ตั้งค่าเป็นความมีชีวิต 100%), ลบค่าว่างของตัวทำปฏิกิริยา และใส่ข้อมูลการตอบสนองต่อปริมาณสารด้วยแบบจำลอง logistic สี่พารามิเตอร์ (4PL) รายงานค่า IC50 เป็นค่าประมาณพร้อมช่วงความเชื่อมั่น 95% และระบุจำนวนการทดลองซ้ำอิสระ ตรวจสอบกราฟและความคลาดเคลื่อน (residuals) สำหรับค่าผิดปกติก่อนยอมรับค่าสุดท้าย

ผลิตภัณฑ์ที่แนะนำ

ผลิตภัณฑ์ทั้งหมดด้านล่างจัดจำหน่ายผ่าน Chemical Express Thailand ส่งคำถาม สำหรับราคา ความพร้อมจำหน่าย หรือคำแนะนำทางเทคนิค

ผลิตภัณฑ์แนะนำจาก Chemical Express

เราจัดส่งผลิตภัณฑ์ Cytotoxicity จาก Merck, MedChemExpress (MCE) และ Elabscience และแบรนด์ชั้นนำระดับสากลอื่นๆ หลากหลายชนิดทั่วประเทศไทย สอบถามหรือสั่งซื้อได้ผ่านแบบฟอร์มสอบถาม หรือพูดคุยกับเราได้ทันทีทาง LINE

thThai

Privacy Overview

This website uses cookies so that we can provide you with the best user experience possible. Cookie information is stored in your browser and performs functions such as recognising you when you return to our website and helping our team to understand which sections of the website you find most interesting and useful.